細胞傳代培養是細胞培養常規保種方法之一，也是幾乎所有細胞生物學實驗的基礎。當細胞隨著培養時間的延長和細胞不斷分裂，細胞之間相互接觸而發生接觸性抑制，生長速度減慢甚至停止，且也會因營養物不足和代謝物積累而不利于細胞生長或發生中毒。因此，細胞在培養瓶中長滿后就需要將其稀釋，分種成多瓶，細胞才能繼續生長。這一過程就叫傳代。

細胞傳代作為一種常規的實驗操作，不但可以擴大細胞培養的數量，同時也可以避免細胞因進入平臺期乃至衰亡期而大量死亡的窘境。所以為了讓細胞保持在對數生長期，維持細胞旺盛的分裂能力，這時候就需要進行細胞傳代。

細胞傳代要在嚴格的無菌條件下進行，并且根據不同細胞采取不同的方法：

? 貼壁生長的細胞用消化法傳代；

? 部分貼壁生長但貼壁不牢固的細胞可以采用直接吹打傳代；

? 懸浮生長的細胞可以采用直接吹打或離心沉淀后再分離傳代，或直接用自然沉淀法吸除上清后，再吹打傳代。

上次講了細胞復蘇操作，今天來講講細胞傳代的操作（適用于貼壁細胞的傳代培養）！

細胞復蘇流程圖

細胞傳代流程圖

01

細胞傳代前準備

? 實驗開始前，將15mL離心管、移液管、槍頭等實驗需要用到的耗材放入無菌超凈工作臺，紫外線照射30min。

? 將*培養基、PBS、胰酶預熱至37℃。

? 倒置顯微鏡下觀察細胞形態和生長密度，當細胞生長密度達到80%~90%匯合度即可進行傳代。

02

胰蛋白酶/EDTA消化

? 棄去舊培養基，PBS洗去殘留的舊培養基，重復洗兩次。

注意：

貼壁加入到培養皿的邊緣，不能直接對著細胞加入PBS，容易把細胞都吹起來。這一步的目的是為了去掉殘余的培養基，殘余的培養基會含有血清和一些離子等，不利于接下來的消化。

? 棄去PBS，加入0.25%Trypsin-0.04%EDTA（T25培養瓶加入約1.5mL，T75培養瓶加入約3mL），迅速鋪勻，保證充分接觸細胞表面（消化時間視具體細胞而定）。

? 顯微鏡下觀察消化情況，約70%~80%細胞收縮變圓后，輕拍培養容器外壁，使細胞脫離培養表面。立即加入2倍胰酶量的*培養基輕搖培養容器，使培養基和胰酶迅速混勻，終止消化。

? 使用吸管或移液管輕輕吹打細胞表面，吹打培養容器底面數次，盡可能將細胞都吹打下來。

注意：

吹打動作不可劇烈，避免產生大量氣泡，否則可能損傷和損失細胞。

? 取所有細胞懸液放入無菌15mL離心管內，250×g，室溫離心4min。

03

細胞培養

? 離心后去除上清。加入適量*培養基，輕柔吹打細胞沉淀，充分吹散、混勻，計數。將細胞按(2.5~4)×104個活細胞/cm2接種至適宜的培養容器內。

? 搖勻細胞，放入37℃、5%CO2、飽和濕度的CO2培養箱中。

? 傳代次日，觀察細胞狀態。若發現較多漂浮細胞，應予以換液。

? 待細胞生長至80%~90%匯合度，即需傳代或凍存。

注意事項

胰酶濃度

推薦胰酶使用濃度為0.25%-0.04%EDTA，使用之前需預熱至37℃且pH值應維持在7.2左右。切忌消化過度（包括胰酶濃度過高、消化時間過長等），否則會導致細胞死亡、分化、狀態變差，分化能力丟失等現象。細胞消化過程中需要在顯微鏡下觀察細胞的消化程度，當看到大部分細胞變圓不貼壁，拍打培養瓶兩側會有大量細胞脫落，此時應立即終止消化；若細胞仍有大部分貼壁，可適當延長消化時間以避免消化不*的情況出現。

細胞的差異

不同種類的干細胞差異很大，特別是與腫瘤細胞株的差異更大，很多經驗不可以直接使用，消化時需要仔細摸索最佳的時間。

接種密度

干細胞傳代過程中接種密度至關重要，如果太低會導致細胞增殖緩慢，甚至導致細胞老化，而細胞的老化是不可逆轉的。一般細胞接種密度為20000個活細胞/cm2即5×105個活細胞/T25，不同的干細胞接種密度會稍有差異，比如hMSC，我們推薦的傳代接種比例為1:2。

吹打細胞動作要輕柔

吹打動作不可劇烈，避免產生大量氣泡，否則可能損傷和損失細胞。